T∕CAV 020-2025 人呼吸道合胞病毒中和抗体检测技术指南 ,该文件为pdf格式 ,请用户放心下载!
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资源简介
以下是对《人呼吸道合胞病毒中和抗体检测技术指南》核心内容的详细总结:
一、文件基础信息
- 标准号:无明确编号
- 发布与实施:2025年4月23日发布并实施
- 归口单位:中国疫苗行业协会
- 起草单位:中国疾病预防控制中心病毒病预防控制所等8家机构
- 适用范围:人呼吸道合胞病毒(HRSV)中和抗体的定性检测和定量测定,基于噬斑减少中和实验(PRNT)。
二、技术原理与优势
- 方法:基于酶联免疫染色的噬斑减少中和实验(PRNT)
- 核心机制:
- 病毒与血清中和抗体反应后接种细胞,通过辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗与显色底物(TrueBlue)结合形成可视化沉淀,量化噬斑减少程度。
- 优势:
- 高精密度、特异性、重复性;
- 适用于所有HRSV毒株及不同来源血清;
- 无需复杂设备,可视化结果直观。
三、关键试剂与器材
试剂材料
- 细胞:HEp-2细胞(ATCC来源,代次≤30代,定期验证敏感性)
- 核心试剂:
- 一抗:单克隆抗体Palivizumab(0.75 μg/mL);
- 二抗:HRP标记山羊抗人IgG;
- 显色液:TrueBlue;
- 病毒毒株:标准株或流行株(如Long株)。
- 溶液体系:
- PBST(含0.05%吐温20)、维持液(2% FBS)、培养液(10% FBS)、微晶纤维素覆盖物(附录A详述配制方法)。
器材设备
- 96孔细胞培养板、CO₂培养箱、II级生物安全柜、酶联免疫斑点分析仪、全自动洗板机等。
四、实验操作流程
1. 病毒准备
- 病毒培养:HRSV接种HEp-2细胞,37℃培养至90%细胞病变(合胞体形成),离心收获病毒上清,-80℃保存。
- 病毒滴度测定(PFU/mL):
- 10倍梯度稀释病毒(10⁻¹~10⁻¹⁰),接种96孔板;
- 覆盖微晶纤维素,培养40~48h;
- 固定后依次加一抗、二抗、TrueBlue显色;
- 酶联斑点分析仪计数,按公式
T = (P × D) / V
计算滴度(P:平均噬斑数;D:稀释倍数;V:接种体积)。
2. 中和抗体检测
- 血清处理:56℃水浴灭活30分钟。
- 血清稀释:4倍倍比稀释(起始稀释度1:4,附录B示例)。
- 中和反应:
- 稀释血清与病毒悬液(1×10³ PFU/mL)等体积混合,37℃中和2h。
- 接种与培养:
- 弃细胞板培养基,加入中和混合液(100μL/孔),吸附1h;
- 更换覆盖物,培养40~48h。
- 噬斑检测:
- 固定→PBST洗涤→加一抗(1h)→加二抗(30min)→TrueBlue显色(10min)→酶联斑点分析仪计数。
五、结果判定与质量控制
1. 实验有效性标准
- 病毒对照孔:噬斑数20~200 PFU;
- 细胞对照孔:无噬斑。
2. 中和抗体滴度计算
- 判定标准:抑制50%噬斑形成的最高血清稀释度(PRNT₅₀);
- 计算公式(Karber法):
\log NT_{50} = L + d(S - 0.5)
L
:最低稀释度对数值;d
:稀释倍数对数差值;S
:各稀释度噬斑减少比率之和(病毒对照为基准)。
六、生物安全要求
- 实验室等级:生物安全二级(BSL-2)实验室(依据《人间传染的病原微生物目录(2023版)》)。
- 规范依据:
- 废弃物处理:遵循GB 19489;
- 实验室管理:符合GB 19489和WS 233。
- 个人防护:实验人员需穿戴防护装备,操作在生物安全柜内进行。
七、附录核心内容
- 附录A(试剂配制):
- PBST、青-链霉素(10kU/mL青霉素+10mg/mL链霉素)、维持液(2% FBS)、覆盖物(微晶纤维素+2×DMEM)等配方。
- 附录B(操作示例):
- 血清4倍梯度稀释示意图(图B.1);
- 96孔板布局:纵向为血清稀释度(双孔/稀释度),横向设细胞对照与病毒对照(图B.2)。
八、参考文献
涵盖法规与标准:
- 《中华人民共和国疫苗管理法》(2019)
- 《中华人民共和国药典》三部(2020)
- GB/T 6682-2008(实验用水标准)
- GB 19489(实验室生物安全通用要求)
- WS 233(病原微生物实验室生物安全通用准则)
总结要点
- 技术核心:PRNT法结合酶联免疫染色,以可视化噬斑减少量化中和抗体。
- 关键创新:解决传统微量中和法对低病变毒株不敏感的问题。
- 标准化流程:从病毒培养、血清处理到结果计算全程标准化,确保可重复性。
- 安全合规:严格遵循生物安全二级标准,强调风险评估与防护。
- 应用价值:为HRSV疫苗和单抗药物的免疫效果评价提供权威检测方案。
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